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Embriologia sperimentale

Biologia dello sviluppo

Biologia dello sviluppo è lo studio dello sviluppo da fecondazione a organismo adulto.

Fasi dello sviluppo embrionale

1. Fecondazione

Fecondazione: cellula uovo + spermatozoo → zigote

2. Zigote

Zigote = cellula totipotente da cui si differenziano tutti i tipi cellulari (+200) ↳ Differenziamento = espressione genica differenziale dello stesso patrimonio genetico

3. Blastula

Blastula = formata da blastomeri tramite segmentazione ↳ veloci mitosi successive che portano alla divisione dello zigote in molte cellule senza aumento di volume * ciclo cellulare più corto: manca G1

4. Gastrula

Gastrula = organizzata in 3 foglietti embrionali:

  • Ectoderma
  • Mesoderma
  • Endoderma
↳ cellule germinali: si staccano precocemente, prima della formazione dei 3 foglietti embrionali ↳ mitosi continua, ma meno veloce

5. Morfogenesi

Morfogenesi = distribuzione delle cellule in base al tipo per dare forma all'embrione ↳ cruciale per il corretto sviluppo embrionale es: mutante Drosophila antenna sedia: antenne al posto degli occhi

6. Accrescimento

Accrescimento → divisione cellulare finemente regolata

  • Riproduzione = assicura trasmissione del patrimonio genetico alla generazione successiva
  • Induzione = ogni cellula embrionale risente dell'ambiente circostante es: notocorda (mesoderma) induce formazione del tubo neurale (ectoderma) * NO notocorda → NO tubo neurale
  • Alcune strutture importanti per l'embrione possono scomparire o avere poco rilievo nell'adulto

Embriologia sperimentale

Embriologia sperimentale = studio di come funziona un embrione, attuato tramite alterazioni

Ambiente e sviluppo embrionale

Esempi

  • Zebrafish:
    • Ambiente con alcohol → sviluppo completamente alterato: NO occhi, NO coda...
    • Ambiente influenza determinazione del sesso
  • Rospo dai piedi a vanga:
    • Condizioni favorevoli → girini normali
    • Condizioni sfavorevoli → girini carnivori per velocizzare metamorfosi e aumentare le possibilità di sopravvivenza
  • Talidomide = farmaco prescritto contro le nausee mattutine della gravidanza, causa focomelia = mancato sviluppo degli arti
    • Meccanismo studiato con zebrafish

Genetica dello sviluppo

Genetica dello sviluppo = studio dei mutanti con problemi nello sviluppo embrionale

  • Geni regolatori dello sviluppo embrionale sono molto conservati

Esempi

  • Gene per lo sviluppo dell'occhio è identico in Drosophila e nell'uomo:
    • Pax 6 nell'uomo (FT)
    • Twin of eyeless in Drosophila
  • Gene per migrazione melanoblasti è identico in uomo e topo

Organizzazione cellulare in tessuti e organi

Mutagenesi

N-etil-N-nitrosurea (ENU) = sostanza usata per mutagenizzare spermatozoi ↳ ogni spermatozoo → 1 mutazione puntiforme random → maschio mutante × femmina normale → fenotipo mutante in F3

  • Genetica diretta:
    • Mutazione random
    • Trovo fenotipo mutato
    • Risalgo a gene mutato
  • Genetica inversa:
    • Mutagenesi del gene di interesse
    • Risalgo al fenotipo mutato

Manipolazione embrionale

Manipolazione embrionale → embriologia sperimentale studia i meccanismi alla base dei processi ontogenetici turbandone il naturale corso mediante manipolazione embrionale → studiare "chi fa cosa"

  • Necessità di un controllo ↳ il più prossimo possibile all'esperimento stesso → deve contenere tutte le variabili es: iniezione di uno specifico mRNA per proteina di interesse controllo: iniezione con mezzo e acido nucleico (es: mRNA per GFP) variabili: iniezione, mezzo, acido nucleico
  • Se fenotipo identico → dovuto a manipolazione, NON a overespressione del gene di interesse

Spemann-Mangold

Studiano "organizzatore" degli anfibi:

  • Taglio regione dell'organizzatore da un embrione
  • Attaccata su un altro embrione in posizione opposta all'organizzatore già presente
  • Formazione di 2 embrioni attaccati
  • Organizzatore dirige la formazione dell'intero organismo

Meccanismi di micromanipolazione

  • Cutting = knockdown genico tramite oligonucleotidi antisenso

    esempio: Morfolino = oligonucleotide resistente alle nucleasi ↳ complementare a mRNA target ↳ appaiandosi impedisce traduzione ↳ può anche alterare splicing ↳ nell'adulto: può silenziare geni in alcuni tipi cellulari ↳ morfante = organismo con genoma wild type ma fenotipo mutante dovuto a silenziamento genico con morfolino

  • Pasting → inserimento di materiale estraneo in un embrione

    esempio: mRNA, geni, cellule ↳ overespressione del messaggero inserito esempio: AgRP (= Agouti Related Peptide) = neuropeptide che regola appetito; → se overespresso: fenotipo embrionale e adulto più grosso * Transgenesi = inserimento di geni estranei in un embrione esempio: GFP → colorante verde fluorescente usato per studio dei tessuti in vivo (es: path finding dei neuroni)

  • Painting

    Colorante iniettato nell'embrione:

    • Iniezione nello zigote → overespresso in tutto l'embrione
    • Iniezione in singolo blastomero → colora solo ciò che si origina da quel blastomero
    • ↳ Mappa presuntiva

Mappe presuntive

Utili per tracciare linee di discendenza cellulare. Durante gastrulazione, la situazione è dinamica → diventa difficile seguire le cellule ↳ colorazione blastomeri per seguirle

  • Differenziamento blastomeri dovuto a determinanti citoplasmatici localizzati (es: mRNA citoplasmatici che conferiscono particolari caratteristiche)
  • Spostamento solco di segmentazione → spostamento determinanti citoplasmatici → cambiamento destino cellulare
  • Styla partita: tunicato che presenta blastomeri con citoplasmi naturalmente pigmentati in modo diverso
  • Facile seguire percorso differenziativo
  • Colori convenzionali:
    • Blu → ectoderma
    • Rosso → mesoderma
    • Giallo → endoderma

Colorazioni

  • Marcatura con coloranti vitali (Vogt, 1929)

    Coloranti vitali = colorano la cellula senza ucciderla esempio: Blu Nilo, Rosso Neutro

    • Agar colorato con coloranti vitali
    • Contatto agar con cellule da colorare
    • Cellule prendono il colore e possono essere seguite
    • Colorante si distribuisce via via nelle nuove cellule → sempre più debole

  • Marcatura con radioisotopi

    • 1 embrione marcato radioattivamente ↳ timidina calda (DNA marcato)
    • 1 embrione normale
    • Taglio di un distretto da embrione marcato
    • Sostituzione del distretto nell'embrione normale
    • Tutte le cellule originate dal distretto caldo saranno radioattive

  • Marcatura genetica

    • Da embrione di una specie (es: quaglia) taglio una regione embrionale
    • Trapianto regione in embrione di specie diversa (es: pollo)
    • Utilizzo di anticorpi per riconoscere le cellule estranee
    • Le 2 specie devono essere simili

  • Marcatura con coloranti fluorescenti

    Non diffondono: caged ↳ iniettati in tutto lo zigote evidenziano una singola regione → embrioni immobilizzati in agarosio in posizioni ottimali → per localizzare regione di interesse → necessari altri marcatori di regioni già conosciute → fluorescenza visibile dopo fotoattivazione con laser della regione di interesse → permettono costruzione di mappe presuntive estremamente precise

Tecniche molecolari per studiare il differenziamento

Per studiare espressione genica si studia mRNA o trascritti a RNA

  • Procedimento:
    • Estrazione RNA da zona di interesse
    • Northern blot
    • Confronto più zone → dove un mRNA è espresso e dove no
    • 1 o pochi geni contemporaneamente
    • Con embrioni giovani: informazione solo temporale
  • Northern blot

    • Elettroforesi su gel di agarosio → supporto instabile
    • Trasferimento per capillarità su filtro di nitrocellulosa → molto più gestibile
    • Ibridazione con sonde marcate complementari a mRNA target

  • RT-PCR (Real Time PCR)

    = PCR fatta su cDNA del messaggero di partenza → ottenuto tramite trascrittasi inversa

    • 2 primers che riconoscono cDNA target
    • Copiatura del cDNA target * presente solo in alcune zone
    • Analisi con elettroforesi
    • Lunghezza del messaggero non è importante
    • Analisi di splicing alternativi → più primers
    • Primers presi su esoni differenti * se contaminazione da DNA genomico → bande più lunghe perché contengono introni
    • Utilizzo fluorofori → visibile anche quantità iniziale di DNA
    • Con PCR serve sempre controllo negativo = miscela di reazione senza DNA

  • Ibridazione in situ

    • Sonda marcata complementare al mRNA di interesse ↳ inserita in tutto l'embrione grazie a detergenti che bucano membrana cellulare
    • Interazione solo in cellule che esprimono mRNA target
    • Informazioni spazio-temporali
    • Aumento T→ solo sonde totalmente complementari legano mRNA target
    • Esempio:
      • Sonda marcata con digossigenina legata a uridina ↳ inserita in cellula
      • Per visualizzare: anticorpo per digossigenina coniugato con fosfatasi alcalina
      • Fosfatasi alcalina rimuove un P da substrato incolore → prodotto colorato
    • Utilizzabili più sonde marcate in modo diverso es: digossigenina, biotina, fluoresceina
    • Localizzazione più precisa: doppia ibridazione con un gene marcatore (che marca un territorio specifico)

  • Immunoistochimica

    • Anticorpi riconoscono solo una forma della proteina ↳ proteina attiva/proteina inattiva
    • Esempio: proteina fosforilata riconosciuta; proteina defosforilata NON riconosciuta

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Scienze biologiche BIO/19 Microbiologia generale

I contenuti di questa pagina costituiscono rielaborazioni personali del Publisher nalul di informazioni apprese con la frequenza delle lezioni di Metodologie di Embriologia sperimentale e studio autonomo di eventuali libri di riferimento in preparazione dell'esame finale o della tesi. Non devono intendersi come materiale ufficiale dell'università Università degli Studi di Milano o del prof Del Giacco Luca.
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