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P Jumpstarter, questo è individuabile grazie a un
marcatore dominante.
Nella F1, selezioneremo potererà entrambi gli
elementi. Si utilizzano i maschi, questo perchè
la trasposizione dell'elemento P avviene con
maggiore efficienza. E questi maschi sono
eterozigoti per l'elemento P mutatore ( non c'è
bisogno di bilanciatore perchè la
ricombinazione non avviene ) e sull'altro
cromosoma ce'è la trasposasi, QUindi prendo i
maschi, con occhi rossi ( e quindi White+ ) e
che abbiano il marker dominante ( segno che ci
sia il Jumpstarter ). A questo punto prendo il Sb ( stubble ), Marker dominante per le ali del torace
maschio e lo incrocio con più femmine TM6, Tb è il bilanciatore
possibili. Le incrocio con femmine con occhio
bianco e che abbiano il bilanciatore. Nella progenie F2 voglio solo individui che abbiano l'occhio rosso, che
non abbiano il marker ( senza Jumpstarter ) e con il bilanciatore ( questo mi serve a stabilizzare la mutazione,
così che se si ha ricombinazione, l'omozigote per i Bilanciatori muore e quindi avrò solo la mutazione o
omozigote o eterozigote, ma in ogni caso l'avrò ).
Quando prendiamo individui maschi, con l'occhio rosso nella progenie F2, poichè la X è portata dalla femmina
( omozigote white- ), siamo sicuri che c'è stata una nuova inserzione dell'elemento P white+ su uno dei 4
cromosomi. Invece se andiamo a prendere un rosso femmina, non sappiamo se c'è una inserzione sull'X ( nel
caso si sia ereditato l'X white + dal padre ) o su un altro cromosoma.
Possiamo avere dei maschi white- con l'elemento P
sul secondo cromosoma e con un bilanciatore ( Cy )
e lo incrociamo con una femmina white-, elemento
Jumper con marcatore. Poi incrociamo la F1 con un
omozigote per white meno e di questo prenderemo
solo quelli con occhi rossi, prenderemo quelli senza
Jumpstarter ( senza Sb ) e quello senza Cy ( così da
essere sicuri che ci siano stati nuovi eventi di
inserzione ).
Questa strategia ci permette di eliminare gli
individui in cui l'elemento P non si sia mosso.
La mutagenesi chimica permette di alterare la
funzione di un gene da molti punti di vista. Però poi
è complicato , nel genoma, andare a identificare la
specifica al'terazione di uno specifico gene. Quando
usiamo un elemento P, possiamo immaginare che vada a inserirsi dentro introne, determinando uno trascritto in
completo, o un trascritto che ha uno stop codon anomalo, oppure può inserirsi nel promotore, o nel 5'. Ci
aspettiamo che quell'eleemtno P sia in grado di inserirsi fu quello nel genoma, ma quello che ha dimostrato
Spradling dice che non è così. Ha caratterizzato i siti di inserzione dell'elemento P in un gene ipotetico.
Analizza 56 eventi inserzione differenti dell'elemento P. Quindi l'elemento P non è un mutageno casuale,
eprchè va a inserirsi preferibilmente nella regione 5', L'eleemento P può creare delle mutazioni ipomorfe, in
seguito all'identificazione della caratteristica di questa caratteristica , si è sviluppata l'idea dell' Enhancer
Trapping. Se si considera che gli elementi P tendono a integrarsi al 5', se io faccio un elemento P con ali al 5' e
3' con un promotore minimo e un reporter , in modo che l'espressione del gene reporter, che è minima o
assente, se cade sotto elementi genomic regolatrici verrà espresso di più!In un colpo solo dovrei avere una
mutazione ipomorfe del gene di interesse. Vedo in quali tessuti il gene è espresso.
• ottengo mutazione ipomorfo
• So dove espresso quel gene
• Mi consente di clonare rapidamente il gene
Struttura dell' enhancer trapper
• ali al 5'-3'
• Gene reporter LacZ , la beta galattosidasi prodotta ha un segnale di localizzazione nucleare
• Come segnale ha usato il primo è il secondo esone che codifica per la trasposasi ( quest ' ultima viene
espressa nel nucleo e quindi se ci si fonde la galattosidasi con questa, è ovvio che vada nel nucleo )
• L'ala al 5' contiene il promotore dell'elemento P, e viene sfruttato come promotore devole per LacZ
• Poi c'è una poly-A tail dell'Hsp90
• Come marker è stato scelto Rosy
All'interno della larva ci sono dei " sacchetti di cellule " detti dischi marginali, sono varie coppie, che al loro
interno contengono delle cellule che hanno acquisito un destino e si sviluppano nel momento in cui avviene la
metamorfosi.
Disco : otto anctienna, ali, zampe, altere, bocca e genitali.
Una volta ottenuta l'inserzione di EZ e aver ottenuto il profilo di espressione. Bisogna clonare il gene ( quello
per cui l'enhancer da espressione ) fiancheggiante. Quindi vicino alla coda di poli A è presente un sito di taglio
XBaI che taglia una solo volta all'interno dell'elemento P è una resistenza alla canomicina
• Quindi si estrae il DNA
• si digerisce con XbaI
• Si circolarizzano i frammenti in presenza di DNA ligasi ( in condizioni estremamente diluite, è più facile che
i frammenti si richiudano su se stessi piuttosto che si appaino con altri frammenti tagliati sempre allo stesso
modo
• possiamo trasformare le cellule e selezionare per
kanamicina E si fa PCR
• Se il frammento che si ottiene è troppo piccolo, si
fa una Iverse PCR. Si fa la digestione di PCR, si
circolarizza con Ligasi e si fa una reazione di
PCR in cui si usano degli oligo usando primer che
si appaiano alle due ali e che contengono al loro
interno la sequenza di interesse
Una variante è l'elemento P(LacW)
Qui la differenza è che il marker è white+,presenza l'ampicillina e un'origine di replicazione
Enhancer Trap:
• ottengo mutazione ipomorfo
• So dove espresso quel gene
• Mi consente di clonare rapidamente il gene
Vantaggi:
• elemento P viene integrato al 5', vicino a una regione regolatoria
• Può alterare l'espressione del gene
• Permette l'isola ione di mutanti espressi in particolare archi di tempo e spazio
Svantaggi:
• la distruzione del gene non è frequente
• Vedi sbobine
Gene Trap or protein Trao
Lo scopo è quello di selezionare eventi nei quali l'elemento P si vada a inserire nelle regioni introni che, è la
successiva traduzione della proteina che si ottiene contiene una proteina di fusione con l'elemento OP.
Quindi se io prendo un elemento P che porta un gene reporter, e basta , senza sequenza di inizio traduzione, ma
con sito accettore e donatore di splicing. Se si inserisce in una regione intronica e se avviene lo splicing ,
questo reporter può essere tradotto nella proteina e sarà fusa con la proteina che vi era vicina.
Lo svantaggio: la presenza delle sequenze
P, potrebbero mutare la funzione della proteina
Però possiamo analizzare in vivo l'espressione
Della nostra proteina. Solitamente quello che si
Ottiene è che la proteina ha la C e la N terminale
Separata dal gene reporter.
L'elemento P ( esone trasponibile ) deve inserirsi nel corretto orientamento. Sono stati usati tre elementi
differenti, che hanno differenti moduli di lettura della GFP ( per far sì che si abbia sempre l'espressione di
GFP ). Abbiamo l'elemento trasponibile P classico poi con ali e siti di splicing e la GFP. Sono usate tre diverse
GFP con tre diversi moduli di lettura.
Incrociano quindi il ceppo con l'elemento P con la femmina col JUmp-starter s, poi le F1 sono incrociate con
femmine white- e poi sono selezionate le F2 che abbiano l'espressione di GFP.
Vantaggi:
• analisi in vivo
• È sotto l'espressione di meccanismi endogeni e quindi riflettono la fisiologia del organismo
Svantaggi:
• sono eventi rari
• L'inserzione deve avvenire nell'interno
• L'inserzione deve avvenire nel giusto modulo di lettura
• L'inserzione deve avvenire nel gesto orientamento
• La proteina è chimerica, la funzionalità potrebbe essere alterata
Abbiamo detto che l'inserzione dell'elemento P, molto spesso, più che una mutazione nulla introduce una
mutazione ipomorfe. Bisogna vedere come si fa ad aumentare la frequenza di un'azione nulle.
Insulatori: lezione 18 Aprile
• sono delle regioni del DNA che legano specifiche componenti trans e grazie alla loro funzione sono i grado
di definire il dominio di attivazione genica. L'insulatore permette di definire il dove 'l'enhancer piuttosto che
che un altro. Quindi si potrebbe ingegnerizzate un elemento P per portare anche un insultatore per portare
una mutazione con completa perdita di funzione.
Che insultare si è utilizzato? Uno che deriva da un particolare elemento trasponibile detto Gipsy, che è un
classico retrotrasposone con due sequenze fiancheggianti LTR, che è in grado di alterare gemi anche a molto
lontani ( 80 che fai? a valle e a monte ) dalla sua regione. L'effetto dell'elemento Gipsy viene ottenuto anche
soltanto inserendo l'insulatore che lo comprende . Gipsy quindi contiene un insultatore detto Su(Hw). Mod è
una sequenza che aumenta l'effetto bloccante di Su(HW) , noi però non la forniamo perchè già naturalemente
presente nei tessuti f di interesse. Chiedi prof/sbobine.
Quindi abbiamo un elemento P con le ali, che continente il gene mini-white+ e yellow+ e questi elementi sono
dotati di due insultatori Su(Hw) e questi i simulatori circondando il gene mini white ( sensibile all'effetto di
posizione ).
Quando si trasferisce alla linea germinale questo elemento P e poi lo si mobilizza , si inserisce nella regione 5'
dei geni e grazie alle sequenze insulatrici riesce a inserire delle mutazioni completa perdita di funzione.
Facendo uno screening si vede che c'è un aumento di mutazione del tipo completa perdita di funzione, questa
proteina Su(Hw) essendo ubiquitinaria, è espressa in ogni luogo. Si è visto delle inserzioni anche delle
inserzioni in regioni eterocromatiche.
Approcci di Genetica inversa usando gli elementi P:
• si crea un mutante attraverso l'uso di elementi P che vengono stabilmente integrati nel gomma della
Drosophyla
• Questo approccio ci permette di fare uno studio molto fine della funzione genica
Uno dei pacchetti di controllo che si utilizza, per poter esprimere le cellule dove e quando si vuole, si uti,issano
i promotori delle proteine HSP70 e dotato di un 3'-UTR anch esso può essere HSP70. Una volta ottenuto il
costrutto si esegue la trasformazione della linea germinale e si fanno delle linee transgeniche in cui si fa in
modo di avere stabilmente quell'el